La coloration à l'acide périodique–Schiff (PAS) est une technique histochimique classique largement utilisée en microbiologie, en mycologie, en anatomopathologie et dans la recherche sur les maladies infectieuses pour la visualisation des polysaccharides et d'autres biomolécules contenant des glucides. Cette méthode repose sur l'oxydation des groupements glycols vicinaux par l'acide périodique, générant des fonctions aldéhydes qui réagissent ensuite avec le réactif de Schiff pour produire une coloration magenta caractéristique. Les parois cellulaires des champignons étant riches en polysaccharides oxydables, notamment les β-glucanes et les mannanes, la coloration PAS offre un excellent contraste pour la détection des structures fongiques dans les cultures et les coupes tissulaires. La réaction PAS met également en évidence le glycogène, les mucines neutres, les glycoprotéines, les glycolipides, les membranes basales et d'autres glycoconjugués, ce qui en fait une technique précieuse pour l'étude de la morphologie microbienne, des interactions hôte–pathogène et des matrices extracellulaires riches en glucides. Sa grande sensibilité pour les structures riches en glucides, son excellente reproductibilité et sa compatibilité avec les tissus fixés au formol et inclus en paraffine (FFPE) ainsi qu'avec les coupes congelées ont fait de la coloration PAS une méthode histochimique de référence en recherche et en diagnostic.

Caractéristiques principales

• Détection histochimique sensible – Permet la visualisation des polysaccharides, du glycogène, des mucines neutres, des glycoprotéines, des glycolipides, des membranes basales et d'autres glycoconjugués.

• Réaction PAS fiable – Repose sur l'oxydation par l'acide périodique suivie de la révélation par le réactif de Schiff, produisant une coloration magenta stable offrant un excellent contraste en microscopie optique en champ clair.

• Large compatibilité avec les échantillons – Adaptée aux coupes tissulaires fixées au formol et incluses en paraffine (FFPE) ainsi qu'aux coupes congelées.

• Compatible avec la méthode PAS-D – Peut être associée à une digestion par la diastase (PAS-D) afin de distinguer le glycogène des autres structures glucidiques positives au PAS.

• Excellente reproductibilité – Adaptée aux travaux de recherche de routine en histologie, microbiologie et maladies infectieuses.

Applications usuelles

• Détection et visualisation de champignons pathogènes, notamment Candida, Aspergillus, Cryptococcus et Histoplasma, dans les cultures et les coupes tissulaires.

• Caractérisation morphologique des parois cellulaires fongiques en microbiologie et en mycologie.

• Étude histopathologique des infections fongiques et des interactions hôte–pathogène.

• Visualisation histochimique des composants extracellulaires riches en polysaccharides des biofilms microbiens.

• Détection du glycogène et d'autres structures riches en glucides en microbiologie, en glycobiologie et dans la recherche sur les maladies infectieuses.