Protocole de PCR quantitative (qPCR) avec SYBR Green pour LightCycler® 480

Ce protocole est destiné à être utilisé mais sans s'y limiter avec Roche LightCycler® 480

Protocole KAPA™ SYBR® FAST qPCR Kit Master Mix (2X) optimized for LightCycler® 480"




Réactifs :
- Matrice ADN
- Amorce sens
- Amorce antisens
- Sonde
- Master Mix (2X)
- Eau de qualité PCR


Protocole général de qPCR

Etape 1: Réaction d'installation de la qPCR
- Avant la préparation des réactions de qPCR reactions, bien mélanger l'ADN matrice, les amorces et les sondes.
- Calculer les volumes requis de chaque composant selon le tableau suivant:
Final Concentration 20μl rxn
Eau de qualité PCR jusqu'à 20μl Selon besoins
Master Mix (2X) qPCR 1X 10μl
Amorce sens (10μM) 200 nM 0.4μl
Amorce antisens (10μM) 200 nM 0.4μl
Matrice ADN (<20 ng/20μl rxn) Variable

Etape 2: Configuration de la plaque
- La préparation du cocktail de réaction est vital pour la qPCR afin de réduire l'effet des erreurs de pipettages entre les échantillons. Assembler tous les éléments ci-dessous à l'exception de la matrice d'ADN ou ADNc.
- Mélanger délicatement tous les composants du cocktail avant de transférer le volume de mélange réactionnel approprié dans chaque tube/plaque de PCR.
- Ajouter la matrice ADN ou ADNc à chaque réaction.
- Les volumes de réaction peuvent être réduits de 20μl à 10μl si des tubes/plaques de faible volume sont utilisés.
- Couvrir ou sceller le tube/ la plaque de réaction et centrifuger brièvement.

Etape 3: Exécution de la réaction qPCR
- Si possible, sélectionner le mode rapide sur l'instrument.
- Programmer le protocole suivant:
  • Activation enzymatique à 95 °C pendant 20 sec - 3 min (1 cycle)
  • Dénaturer à 95 °C pendant 1 - 3 sec
  • Appariement/Elongation/Acquisition à 60 ºC moins de 20 sec
Faire 40 cycles des 2 derniers points.

Etape 4: Analyse des résultats
- L'analyse des données varie en fonction de l'instrument utilisé. Se référer à votre guide de l'utilisateur de l'instrument.

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