Les tissue arrays congelés, également appelés microarrays de tissus congelés (frozen TMA) ou cryoarrays, sont constitués de plusieurs échantillons ou carottes de tissus congelés disposés dans un bloc récepteur congelé commun, généralement à l’aide d’un composé OCT, puis sectionnés au cryostat. Ce format permet d’analyser plusieurs échantillons sur une même lame dans des conditions expérimentales étroitement comparables et peut contribuer à réduire la variabilité inter-lames et celle liée aux étapes de préparation. Des études évaluées par les pairs ont démontré l’utilisation des tissue arrays congelés pour l’analyse de l’ADN, de l’ARN et des protéines, notamment par immunohistochimie (IHC), immunocytologie, hybridation in situ de l’ARN et hybridation fluorescente in situ (FISH).
Les tissue arrays congelés peuvent être organisés sous différentes formes :
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Tissue arrays d’une même espèce : Spécimens provenant d’une seule espèce, permettant de comparer différents tissus, régions anatomiques, états pathologiques, groupes expérimentaux ou échantillons individuels.
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Tissue arrays multi-espèces : Spécimens provenant de différentes espèces réunis au sein d’un même array, permettant des analyses comparatives des tissus ainsi que des études d’anticorps ou de biomarqueurs, sous réserve d’une validation appropriée des performances analytiques selon l’espèce.
Caractéristiques principales
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Spécimens de tissus congelés : Adaptés à la cryosection au cryostat.
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Plusieurs spécimens par array : Permet de regrouper plusieurs échantillons au sein d’un même array.
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Préservation de certaines cibles moléculaires : Permet de conserver certaines cibles moléculaires endogènes avant une fixation adaptée à l’analyse utilisée.
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Analyse standardisée sur lame : Permet de comparer les différents spécimens dans des conditions expérimentales étroitement harmonisées.
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Large compatibilité avec les applications de recherche : Compatible avec les workflows histologiques et les analyses moléculaires.
Applications de recherche usuelles
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Analyse de l’expression des protéines et immunohistochimie.
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Immunofluorescence, hybridation in situ de l’ARN et analyses de l’ADN.
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Hybridation fluorescente in situ (FISH).
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Criblage de biomarqueurs et analyses comparatives de tissus.
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Recherche translationnelle.